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학위논문
저자정보

조병제 (부산대학교, 부산대학교 대학원)

지도교수
송영옥
발행연도
2015
저작권
부산대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.

이용수3

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이 논문의 연구 히스토리 (2)

초록· 키워드

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The purpose this study was to develop mouthwash product with solid-state fermented oriental medicinal herb (OMH). And an extra emphasis was laid on the potential effect of root of Taraxacum, known to have anti-inflammatory efficacy, on amelioration of oxidative stress induced by lipopolysaccharide (LPS). Solid-state fermentation of fresh root of Taraxacum and dried silver magnolia, licorice, and cnidium were carried out with Phellinus linteus mycelium. Fresh root of Taraxacum was successfully fermented by liquid spawn of Phellinus linteus mycelium (10% w/v). For dried OMHs such as silver magnolia, licorice, and cnidium, additional water at 30% (final w/v concentration) was needed for the fermentation, while brown rice powder was required as an extra nutrient at 10% (w/w) to the dried leaves of mint. The amount of total phenolic compounds and DPPH scavenging activities of OMH increased significantly (p<0.05) by solid-state fermentation. Anti-microbial activities of the fermented OMH also increased, which were approximately 100-fold greater than those of the unfermented samples. When the ethanol extracts of the fermented OMHs including silver magnolia, licorice, cnidium, and root of Taraxacum were mixed together in the ratio of 5:3:2:1, the mouthwash product had the maximum anti-microbial effect against oral pathogenic bacteria. Hot water extracts of mint and clove, as base components, were mixed in the ratio of 100:15. In the sensory evaluation, scores for the overall preference and the purchase intention were higher compared to those of commercially available OMH-based mouthwash product (p<0.05).
In animal study, potential effect of Taraxacum herba, known to have anti-inflammatory efficacy, on amelioration of oxidative stress induced by LPS were first studied. Different amount of hot water extracts of fresh root of Taraxacum was orally administrated to the mice, the elevated level of reactive oxygen species (ROS), peroxinitrite, thiobarbituric acid related substances (TBARS) in the plasma and/or liver by LPS injection decreased in dose-dependent manner (p<0.05) via suppression of inducible nitric oxide synthase (iNOS) and cyclo-oxygenase 2 (COX-2) expression through inhibition of nuclear factor-κB (NF-κB) activation. Tumor necrosis factor-α (TNF-α) and interleukin-6 (IL-6) concentrations in plasma for the fermented Taraxacum coreanum Nakai group decreased compared to those of LPS control group informing that production of inflammatory cytokines were reduced by Taraxacum coreanum Nakai administration (p<0.05).
In second part of animal study, anti-oxidant and anti-inflammatory effects of fresh root of Taraxacum, fermented Taraxacum coreanum Nakai, mycelium of Phellinus linteus were compared. Protein expression of iNOS, and COX-2 elevated in LPS control group decreased with the administration of fresh root of Taraxacum, fermented Taraxacum coreanum Nakai, and the mycelium of Phellinus linteus, respectively with the greatest suppression from mice group fed the fermented Taraxacum coreanum Nakai (p<0.05). Superoxide dismutase protein expressions in Taraxacum coreanum Nakai and the mycelium of Phellinus linteus groups increased compared to that in LPS control group. The protein expressions of catalase and glutathione peroxidase demonstrated the highest level in mice group fed the fermented root of Taraxacum. Fifteen and seventeen compounds were isolated from fresh and fermented root of Taraxacum, respectively by liquid chromatography. The major compound identified by mass chromatography in fresh root of Taraxacum was taraxinic acid β-D glucopyranosyl ester with molecular weight of 424, followed by taraxinic acid with molecular weight of 262. In the fermented root of Taraxacum, taraxinic acid appeared as the most active compound. Accordingly, it is highly probable that more taraxinic acid was produced from the taraxinic acid β-D glucopyranosyl ester in the process of solid-state fermentation. After fermentation, the amount of taraxinic acid showed a notable increase by about 400%.
In this study, the Taraxacum herba, known to have anti-inflammatory effect, was found having specific effects in treating LPS-induced inflammation once it was fermented and accordingly had increased anti-oxidant and anti-inflammatory efficacy. It is conclusive that, in the process of fermentation, the taraxinic acid β-D glucopyranosyl ester was bio-converted to low-molecule taraxinic acid by mycelium of Phellinus linteus and became more effective in amelioration of oxidative stress.

목차

List of Tables xi
List of Figures xv
Ⅰ. 서 론 1
Ⅱ. 연구사 6
1. 한약재의 생리활성 6
1) 약용식물 6
2) 한약재의 항균효과 및 구강질환에 효과를 지닌 한약재 7
(1) 천궁 8
(2) 길경 9
(3) 감초 10
(4) 정향 11
(5) 후박 11
(6) 세신 12
(7) 박하 13
2. 포공영의 생리활성 13
1) Luteolin의 생리활성 16
(1) 항산화 활성 16
(2) 항염증 효과 19
(3) 항균 활성 19
(4) 항암 효과 20
2) Taraxinic acid의 생리활성 22
3. 상황버섯 균사체의 효능 24
4. 고체발효 25
1) 고체발효의 장점 25
2) 한약재와 고체발효 27
5. 염증 및 산화적 스트레스 28
1) 염증 발생 기전 28
2) Lipopolysaccharide의 염증기전 32
3) 산화적 스트레스 36
6. 한방 구강세척제 37
1) 구강세척제 37
2) 한약재의 항균 및 항염증 효과 38
Ⅲ. 재료 및 방법 41
제 1장. 고체발효를 통한 한방구강세척제 개발 41
1. 재료 및 시약 41
1) 한약재 41
2) 상황버섯 균사체 41
3) 구강 질환 관련 균주 42
4) 시약 42
2. 고체발효 43
1) 상황버섯 균사체 배양 43
2) 상황버섯 액체 종균 제조 43
3) 고체발효 조건 44
(1) 한약재의 전처리 44
(2) 한약재 고체발효 44
3. in vitro 고체발효 한약재의 활성 확인 45
1) 한약재 및 발효 한약재 추출물 제조 45
(1) 포공영 추출물 제조 45
(2) 후박, 감초, 천궁, 박하 추출물 제조 45
2) 총 페놀 함량 측정 46
3) 유리기 소거능 측정 46
(1) DPPH 소거능 46
(2) Nitrite 소거능 46
(3) Superoxide anion 소거능 47
4) 항균활성 측정 47
(1) 균주 및 배지 47
(2) Paper disk diffusion법을 이용한 항균 활성 측정 48
4. 발효한방 구강세척제 개발을 위한 조성비 개발 48
1) 구강세척제용 베이스 제조 48
2) 구강세척제 유효성분 조성비 확립 50
3) 구강세척제 조성비 확립 50
4) 구강세척제의 구취 제게 효과 측정 51
5) 구강세척제의 소비자 기호도 조사 51
5. 통계처리 52
제 2장. in vivo에서 포공영 및 발효 포공영의 항산화 및 항염증 기능성 비교 53
1. 재료 및 시약 53
1) 재료 53
2) 시약 54
2. 실험동물 및 시료 처치 54
1) 동물 54
2) LPS 처리 55
3) 시료 투여 및 실험군 55
(1) 포공영의 농도의존성 실험 55
(2) 포공영과 발효 포공영의 효과 비교 57
3. 해부 및 시료채취 57
4. 혈액의 생화학적 분석 58
1) 혈중 아미노기 전이효소 활성 측정 58
2) 혈중 blood urea nitrogen 농도 측정 58
3) 혈중 산화적 스트레스 관련 인자 측정 59
(1) 활성 산소종 농도 59
(2) Peroxynitrite 농도 59
4) 혈중 지질농도 측정 60
(1) 중성지방 농도 60
(2) 총 콜레스테롤 농도 60
(3) 유리지방산 농도 60
5) 혈중 염증성 cytokine 농도 측정 61
(1) Tumor necrosis factor-α 농도 61
(2) Interleukin-6 농도 62
5. 간의 생화학적 분석 62
1) 간의 산화적 스트레스 관련 인자 측정 62
(1) 간의 post-mitochondria fraction 분리 62
(2) 활성산소종 농도 63
(3) Peroxynitrite 농도 63
(4) 지질과산화물 농도 63
2) 간의 지질 농도 측정 64
(1) 간의 지방질 추출액 제조 64
(2) 지방질 농도 64
6. Western blot assay를 이용한 간의 염증 관련 인자 발현 65
1) 시료 제조 65
2) 염증 관련 인자의 발현 측정 66
(1) Nuclear factor-κB 66
(2) Inducible nitric oxide synthase 68
(3) Cyclo-oxygenase 2 68
(4) Superoxide dismutase 69
(5) Catalase 69
(6) Glutathione peroxidase 70
7. 통계처리 70
제 3장. 발효 포공영의 성분 분석 및 활성 물질 동정 71
1) Liquid chromatography 71
2) Mass spectrometric analysis 71
Ⅳ. 결과 및 고찰 74
제 1장. 고체발효에 의한 한약재의 기능성 증진 및 발효한방세척제 개발
1. 한약재의 고체발효 조건 확립 74
1) 상황버섯 액체 종균 배양 74
2) 생 포공영의 고체발효 양상 74
3) 건조 한약재의 고체발효 양상 76
2. 고체발효에 의한 한약재의 항산화 기능 증대 79
1) 고체 발효 포공영의 기능성 증진 79
(1) 총 페놀 함량 증가 79
(2) 유리기 소거능 증대 81
가. DPPH 소거 효과 81
나. Nitrite 소거 효과 81
다. Superoxide anion 소거 효과 84
2) 고체발효에 의한 후박, 감초, 천궁, 박하의 기능성 증가 86
(1) 총 페놀 함량 증가 86
(2) DPPH 소거능 증가 88
3. 고체발효 한약재의 항균 활성 증대 88
4. 발효 한방 구강세척제 개발 91
1) 발효 한방 구강세척제 유효성분 조성비 개발 91
2) 발효 한방구강세척제 조성 확립 91
5. 발효 한방 구강세척제의 구취 제거 효과 95
6. 발효 한방 구강세척제의 소비자 기호도 98
제 2장. 포공영 및 발효 포공영의 항염증 및 항염증 효과 99
1. 포공영의 염증 억제 및 항산화 효과 99
1) 체중 및 장기 무게 99
2) 포공영의 산화적 스트레스 개선 효과 101
(1) 혈액의 산화적 스트레스 개선 효과 103
가. 혈중 활성산소종 농도 103
나. 혈중 peroxinitrite 농도 105
(2) 간의 산화적 스트레스 개선 효과 105
가. 활성산소종 농도 105
나. Peroxynitrite 농도 106
다. TBARS 농도 108
3) LPS에 의한 간 및 신장 손상 110
(1) 혈중 아미노기 전이효소 농도 110
(2) 혈중 blood urea nitrogen 농도112
4) 포공영의 지질 저하 효과 113
(1) 혈중 지질 농도 113
(2) 간지질 농도 115
5) 포공영의 염증 인자 발현 억제 효과 117
(1) Nuclear factor-κ B 발현 117
(2) Inducible nitric oxide synthase 발현 119
(3) Cyclo-oxygenase 2 발현 120
2. 발효 포공영의 염증 억제 및 항산화 효과 120
1) 체중 및 장기 무게 변화 121
2) 발효 포공영의 산화적 스트레스 개선 효과 121
(1) 혈액의 산화적 스트레스 개선 효과 121
가. 혈중 활성산소종 농도 121
나. 혈중 peroxinitrite 농도 124
(2) 간의 산화적 스트레스 개선 효과 126
가. 간의 활성산소종 농도 126
나. 간의 peroxinitrite 농도 129
3) 발효 포공영의 염증성 cytokine 생성 억제 효과 129
(1) 혈중 tumor necrosis factor-α 농도 129
(2) 혈중 interleukin-6 농도 132
4) LPS에 의한 간 및 신장 손상 133
(1) 혈중 아미노기 전이효소 농도 133
(2) 혈중 blood urea nitrogen 농도 135
5) 발효에 의한 지질 저하 효과 136
(1) 혈중 지질 농도 136
(2) 혈중 유리지방산 농도 136
(3) 간지질 농도 138
6) 발효 포공영의 염증관련 인자 발현 억제 효과 138
(1) Nuclear factor-κB 발현 138
(2) Inducible nitric oxide synthase 발현 141
(3) Cyclo-oxygenase 2 발현 142
7) 발효 포공영의 항산화 관련 효소 발현에 미치는 영향 143
(1) Superoxide dismutase 발현 143
(2) Catalase 발현 145
(3) Glutathione peroxidase 발현 146
제 3장. 포공영 및 발효 포공영의 활성 물질의 분리 및 동정 147
1. 포공영 활성 물질의 정성 분석 147
2. 포공영 및 발효 포공영의 활성물질 동정 및 정량분석 151
1) 포공영 및 발효 포공영의 luteolin 확인 151
2) 포공영 및 발효 포공영의 활성 물질 확인 153
3. 고체발효에 의한 포공영 활성 물질 함량의 변화 156
Ⅴ. 요약 및 결론 160
참고문헌 166
Abstract 200

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