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논문 기본 정보

자료유형
학위논문
저자정보

임현화 (단국대학교, 단국대학교 대학원)

지도교수
정윤화
발행연도
2016
저작권
단국대학교 논문은 저작권에 의해 보호받습니다.

이용수10

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2019

갯기름나물 뿌리 추출물의 항산화 활성
임현화 ,  김인용 ,  정윤화 한국식품영양과학회지 2019.01 학술저널

2016

갯기름나물 뿌리 추출물의 항산화 활성
임현화 2016.01 학위논문

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물과 에탄올을 이용하여 갯기름나물 뿌리의 추출물을 제조하고, 총 페놀 및 총 플라보노이드의 함량, DPPH radical 소거활성, ABTS radical 소거활성, ferric reducing antioxidant power (FRAP), Oxygen radical absorbance capacity (ORAC), 세포 내 활성산소종(reactive oxygen species, ROS)소거 활성, 항산화효소 활성 등을 측정하여 항산화 활성을 조사하였다.
총 페놀 함량은 갯기름나물 뿌리 에탄올 추출물(PJREE)이 5.64 mg GAE/g, 물 추출물(PJRDE)이 4.75 mg GAE/g이었으며, 총 플라보노이드 함량은 PJREE이 664.17 μg QE/g, PJRDE이 541.61 μg QE/g이었다. 총 페놀과 플라보노이드 함량은 PJREE에서 가장 많았다. DPPH radical 소거활성은 추출물의 농도(125-1,000 μg/mL)에 비례하여 증가하였고, PJREE이 PJRDE보다 유의적으로 높았다. ABTS radical 소거활성은 PJRDE(42.24 μmol TE/g)보다 PJREE(50.55 μmol TE/g)이 높았으며 추출물의 농도에 비례하여 증가하였다. Radical 소거 활성은 모두 PJREE에서 높았다. FRAP 값은 PJREE이 39.76 μM FeSO4/g, PJRDE이 27.28 μM FeSO4/g으로 PJREE의 환원력이 유의적으로 높았다. ORAC은 PJREE이 133.37 μM TE/g, PJRDE이 58.16 μM TE/g으로 PJREE에서 활성이 높았다.
H2O2를 처리한 HepG2 세포내에 갯기름나물 뿌리 추출물의 세포사멸 억제 활성은 농도 의존적으로 (125-1,000 ㎍/mL) 증가하였으며, PJREE에서 가장 활성이 높았다. 세포내 ROS 소거활성은 H2O2의 처리로 HepG2 세포 내 ROS를 다량으로 증가시킨 후, 갯기름나물 뿌리 추출물을 처리하여 측정하였다. 농도 의존적으로 ROS 소거활성이 증가하였고, PJRDE보다 PJREE의 ROS 소거활성이 유의적으로 높았다. 갯기름나물 뿌리 추출물은 H2O2 처리로 저하된 항산화 효소활성을 증가시켰다. Superoxide dismutase (SOD), catalase (CAT), glutathione peroxidase (GPx), glutathione reductase (GR) 활성은 PJRDE보다 PJREE에서 높았고, catalase (CAT)활성은 PJREE에서만 유의적으로 증가하였다.
갯기름나물 뿌리 추출물은 기능성 물질인 페놀, 플라보노이드를 함유하고 있으며, 항산화효소활성을 증가시켜 세포의 산화스트레스를 억제할 수 있어 기능성식품의 소재로 활용할 수 있을 것으로 생각된다.

목차

Ⅰ. 서 론 1
Ⅱ. 문헌고찰 3
1. 갯기름나물 3
2. 항산화제 3
2.1. 항산화의 정의 3
2.2. 항산화제의 기능 4
2.3. 항산화제의 종류 4
3. 항산화활성 측정 방법 5
3.1. Electron transfer(ET)법 5
3.1.1 ABTS radical scavenging activity 5
3.1.2. Ferric reducing antioxidant power(FRAP) 5
3.2. Hydrogen atom transfer 6
3.2.1. DPPH radical scavenging activity 6
3.2.2. Oxygen radical absorbance capacity(ORAC) 6
4. 활성산소종(Reactive oxygen species, ROS) 6
4.1. 활성산소종의 정의 6
4.2. 활성산소종의 생성 및 역할 7
4.3. 활성산소종 소거활성 7
Ⅲ. 재료 및 방법 8
1. 실험 재료 및 기기 8
2. 시료의 추출물 제조 8
3. 일반성분측정 8
4. 총 페놀 함량 측정 9
5. 총 플라보노이드 함량 측정 9
6. 항산화활성 측정 9
6.1. DPPH radical 소거 활성 측정 9
6.2. ABTS radical 소거 활성 측정 10
6.3. Ferric Reducing Antioxidant Power (FRAP) 측정 10
6.4. Oxygen radical absorbance capacity (ORAC) 측정 10
7. HepG2 세포에서 갯기름나물 추출물의 산화적 스트레스 억제활성 11
7.1. HepG2 세포배양 11
7.2. MTT 분석을 통한 세포생존율 측정 11
7.3. 세포 내 활성산소종(ROS) 소거활성 측정 12
7.4. 항산화효소활성 측정 12
7.4.1. Superoxide dismutase (SOD) 활성 측정 12
7.4.2. Catalase (CAT) 활성 측정 12
7.4.3. Glutathione peroxidase (GPx) 활성 측정 13
7.4.4. Glutathione reductase (GR) 활성 측정 13
8. 통계처리 14
Ⅳ. 결과 및 고찰 15
1. 일반 성분 15
2. 추출 수율 16
3. 총 페놀 및 플라보노이드 함량 17
4. 항산화 활성 19
4.1. DPPH radical scavenging activity 19
4.2. ABTS radical scavenging activity 22
4.3. Ferric Reducing Antioxidant Power (FRAP) 25
4.4. Oxygen radical absorbance capacity (ORAC) 22
5. HepG2 세포에서 갯기름나물 추출물의 산화적 스트레스 억제 활성 28
5.1. MTT 분석을 통한 HepG2 세포생존율 31
5.2. 세포 내 활성산소종(ROS) 소거활성 33
5.3. 항산화효소 활성 35
5.3.1. Superoxide dismutase (SOD) 활성 35
5.3.2. Catalase (CAT) 활성 37
5.3.3. Glutathione peroxidase (GPx) 활성 39
5.3.4. Glutathione reductase (GR) 활성 41
6. 상관분석 43
6.1. 총 페놀 및 플라보노이드 함량과 항산화 활성의 상관관계 43
6.2. 총 페놀 및 플라보노이드 함량과 세포 내 항산화 활성의 상관관계 45
요약 및 결론 47
참고문헌 49
영문요약 59

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